Central de Vendas
promocao
Peptamen

Peptamen Pó

Peptamen Pó
PEPTAMEN é uma nutrição oligomérica, isocalórica, nutricionalmente completa e balanceada, isotônica, sob forma facilmente absorvível, para via oral ou enteral. Apresenta como fonte protéica o soro de leite hidrolisado, proporcionando assim uma mistura singular de Peptídeos com êxito comprovado na melhora do estado nutricional de pacientes com função gastrintestinal gravemente comprometida.


Peptídios  
 
Silk15 observou que dois mecanismos principais estão envolvidos na absorção e transporte dos hidrolisados de proteína. Os aminoácidos livres são carreados pelos sistemas de transporte de aminoácidos específicos para grupos e os Peptídeos são absorvidos por sistemas de transporte separados. As evidências indicam que durante algumas doenças, tais como desnutrição proteico-calórica e espru celíaco, a absorção de aminoácidos fica comprometida, enquanto que a absorção de Peptídeos permanece intacta16,17. Os sistemas de transporte foram identificados para di e triPeptídeos18,19. A absorção direta de Peptídeos maiores sem digestão foi documentada6,7,13,18,24. Gardner25, em sua extensa revisão da absorção intestinal da proteína, descreve duas vias potenciais para a absorção de Peptídeos:

  • via transcelular
  • paracelular (intercelular).

    Na via transcelular, os Peptídeos penetram na membrana da borda em escova da mucosa através de mecanismos que incluem: sistemas de transporte mediados por carreador, poros aquosos, difusão através de regiões lipídicas na membrana e pinocitose. Essa via transcelular é a forma mais comum de absorção de Peptídeos.
    Na via paracelular, as moléculas podem passar entre as células da mucosa, possivelmente nos pontos de imperfeições potenciais nas camadas da mucosa. Embora os mecanismos de transporte exatos permaneçam sob investigação, estudos têm feito progressos significativos, chegando à conclusão que os Peptídeos definitivamente podem e de fato atravessam o intestino delgado em seres humanos saudáveis e doentes. A fim de maximizar a absorção de nitrogênio em pacientes com comprometimento gastrintestinal, pode ser bem vantajoso empregar dietas à base de Peptídeos que utilizam os dois sistemas carreadores de aminoácidos e Peptídeos.
    Pequenos Peptídeos podem trazer outros benefícios. Os Peptídeos, na faixa de quatro a doze aminoácidos parecem estimular as peptidases de borda em escova e, portanto, dão suporte à massa e função intestinais, bem como, potencialmente, reduzem a translocação bacteriana proveniente da atrofia da mucosa26. A translocação bacteriana pode ser descrita como o processo pelo qual as bactérias colonizam o trato gastrintestinal e passam, através da mucosa, para contaminar os nódulos linfáticos e órgãos sistêmicos.
    Em indivíduos normais e saudáveis, parece haver pouco benefício proveniente do emprego de dietas à base de Peptídeos. Todavia, em situações de má digestão, má absorção ou stress fisiológico, uma fórmula de Peptídeos pode ser absorvida e utilizada de maneira mais eficiente do que as fórmulas de proteína intacta ou aminoácidos livres.

    Ficou demonstrado que quantidades biologicamente significativas (30-70%) de Peptídeos com diferentes comprimentos da cadeia de aminoácidos são absorvidas na forma de Peptídeos13,14.

    Num estudo em animais sob jejum que receberam uma dieta à base de proteína intacta, até 31% dos aminoácidos encontrados no sangue dos mesmos achavam-se na forma de Peptídeos6. Um outro estudo em animais revelou que 70% dos aminoácidos foram absorvidos na forma de Peptídeos após uma ingestão dietética normal7.
    Também é importante observar que o comprimento da cadeia de Peptídeos não é uma declaração completa de capacidade de absorção. As seqüências de aminoácidos dos Peptídeos diferem, dependendo da fonte de proteína e do grau e tipo da hidrólise. Como a seqüência de aminoácidos pode influenciar a absorção, o conhecimento da sequência de aminoácidos da cadeia de Peptídeos poderia ser tão importante quanto o comprimento da cadeia. A magnitude dessa tarefa é óbvia, uma vez que para apenas di, tri, tetra e pentaPeptídeos, há, respectivamente, 400, 800, 160.000 e 3,2 milhões de seqüências possíveis a serem testadas quanto ao potencial de absorção6. Essa tarefa é complexa pelo fato de que o número total de carreadores é desconhecido e pelo fato de que as proteínas carreadoras podem ser compartilhadas por mais de um aminoácido ou peptídeo. Por conseguinte, se, por um lado, um perfil de peptídeo perfeito ainda tenha de ser conclusivamente identificado, por outro lado existe evidência conclusiva de que diPeptídeos, triPeptídeos e até mesmo Peptídeos com cadeias de mais de quatro ou mais aminoácidos podem ser absorvidos intactos.

    "Uma grande variedade de Peptídeos é absorvida intacta... e alguns desses Peptídeos são Peptídeos maiores, com comprimento de três a doze aminoácidos."
    Gary Zaloga, MD

    		•   
       



    Distribuição energética  
      As necessidades calóricas podem ser estimadas em 20-25kcal/kg/dia para pacientes sedentários e 25-30kcal/kg/dia para pacientes com doença crítica64.
    PEPTAMEN assegura o fornecimento de uma dieta completa e balanceada em proteínas, gorduras e carboidratos com distribuição energética equilibrada, proporcionando uma dieta isocalórica (1cal/ml).
    Distribuição energética para macronutrientes em % , g/l e fontes

      % g/l Fonte
    PEPTAMEN PÓ      
    Proteína 16 40 Proteína do soro de leite hidrolisada
    Lipídio 33 39 70% TCM
    20% óleo de soja
    5% gordura láctea
    5% lecitina de soja
    Carboidrato 51 123 75% maltodextrina e amido de batata
    25% sacarose
           

    		 
       



    Carboidratos  
     
    PEPTAMEN oferece teor moderado de carboidratos com predominância de maltodextrina e pequena quantidade de sacarose, permitindo assim que a fórmula apresente baixa osmolaridade proporcionando maior tolerância à alimentação por sonda, atendendo às necessidades energéticas do paciente com maior rapidez.

    O nível moderado de carboidratos de PEPTAMEN produz menos CO2 e reduz o QR (quociente respiratório) e stress na função pulmonar quando comparados às dietas com alto teor desse nutriente.

    Distribuição quantitativa e qualitativa da fonte glicídica

      PEPTAMEN Pó
    Fonte 75% maltodextrina
    25% sacarose
    g/l 123

    O intestino não pode absorver lactose. Essa deve ser hidrolisada pela lactase, uma enzima presente nas microvilosidades da mucosa intestinal. Os produtos dessa hidrólise, a glicose e a galactose, podem então serem absorvidas. Com a atividade lactásica reduzida, o excesso de lactose é fermentado por bactérias no interior do intestino, causando cólicas abdominais e diarréias. A deficiência em lactase é um transtorno comum em pacientes em terapia nutricional.

    A lactose é omitida a fim de se evitar transtornos gastrintestinais. Assim sendo, PEPTAMEN é clinicamente isento de lactose. Uma ingestão inferior a 5g por dia em dietas enterais é bem tolerada por indivíduos sensíveis a esse nutriente e é considerada como "clinicamente isenta de lactose"63.

    PEPTAMEN é clinicamente isento de lactose

    		  
       



    Proteínas  
     
    Vários fatores afetam a absorção e qualidade da proteína. São eles:
    o comprimento da cadeia, a fonte, a seqüência de aminoácidos, o grau e o tipo de hidrólise.
    No caso de pacientes com função gastrintestinal comprometida, os Peptídeos oferecem vantagens em relação à proteína intacta e aos aminoácidos livres. Os Peptídeos de PEPTAMEN trazem benefícios relacionados com a retenção e utilização do nitrogênio intensificada e melhor manutenção da integridade gastrintestinal32.
    O soro de leite encontrado em PEPTAMEN é hidrolisado enzimaticamente, podendo intensificar a tolerância a pacientes com esvaziamento gástrico retardado devido ao processo de sua doença e reduzir o risco de aspiração67,68.
    A proteína do soro de leite hidrolisada é uma excelente fonte de cisteína, a qual tem importância fundamental na síntese da glutationa, que por sua vez protege contra a produção excessiva de radicais livres36,41.
    PEPTAMEN apresenta um perfil protéico de excelente qualidade, com uma contagem química > 114% do padrão da FAO/OMS.
    PEPTAMEN apresenta 16% do seu valor calórico como proteína.

    Distribuição quantitativa e qualitativa da fonte protéíca

      Fonte g/l
    Peptamen Soro de leite hidrolisado enzimaticamente 40

  • Relação N/cal totais = 1:160 (PÓ)

  • Relação N/cal não prot = 1:134 (PÓ)

  • Isento de glúten

    No caso do PEPTAMEN PÓ a hidrólise é por novozima, que proporciona uma determinada faixa de tamanhos de Peptídeos. O tratamento enzimático constitui um processo de hidrólise enzimática que, quando concluído, é termicamente desativado de modo que todas as enzimas são completamente desativadas e nenhuma outra hidrólise ocorre após o tratamento térmico.

    PEPTAMEN proporciona 100% de proteína de soro de leite hidrolisada.





    Perfil de aminoácidos - PEPTAMEN PÓ

    Aminoácido 100g PÓ 100ml
    Isoleucina 1,42 0,305
    Leucina 2,06 0,443
    Lisina 1,88 0,404
    Metionina 0,41 0,088
    Cistina 0,61 0,131
    Fenilalanina 0,58 0,125
    Tirosina 0,66 0,142
    Treonina 1,58 0,340
    Triptofano 0,43 0,092
    Valina 1,3 0,280
    Arginina 0,4 0,086
    Histidina 0,32 0,069
    Alanina 1,07 0,230
    Ácido aspártico 2,17 0,467
    Ácido glutâmico 3,29 0,707
    Glicina 0,35 0,075
    Prolina 1,2 0,258
    Serina 1,09 0,234
    Taurina 0,037 0,008


    		•  
       



    Lipídios  
     
    O perfil lipídico de PEPTAMEN foi projetado especialmente para otimizar a tolerância para pacientes com função gastrintestinal comprometida.
    A razão de TCM:TCL é de 70:30. Esse perfil favorece a absorção já que o TCM (triglicérides de cadeia média) é prontamente absorvido62. Já os TCL (triglicérides de cadeia longa) são suscetíveis à peroxidação, contribuindo potencialmente para o stress oxidativo. O baixo nível de TCL de PEPTAMEN pode ajudar a reduzir a produção de radicais livres o que é particularmente importante para pacientes com stress oxidativo, tais como aqueles que se encontram em unidade de tratamento intensivo.
    O TCM contribui com a maior parte de gordura saturada. No entanto, essa não traz riscos de doenças cardiovasculares.
    Os lipídios de PEPTAMEN proporcionam 33% das calorias totais.

    Distribuição quantitativa e qualitativa da fonte lipídica

      PEPTAMEN PÓ
    Fonte % 70% TCM
    20% óleo de soja
    5% lecitina de soja
    5% gordura láctea
    g/l 39

    PEPTAMEN proporciona 70% do lipídio na forma de TCM.


    Perfil lipídico - PEPTAMEN PÓ

    Lipídio (g) 100g 100ml
    Saturado 13 2,80
    Monoinsaturado 1,4 0,30
    Poliinsaturado 2,5 0,54
    w6 2,19 0,47
    w3 0,3 0,07
    w6 : w3 7:1 7:1
    Colesterol (mg) 2,25 0,48
    *A maior parte da gordura saturada é derivada do TCM que não contribui para doenças cardiovasculares.


    Perfil de Ácidos Graxos - PEPTAMEN PÓ

    Lipídio (g)   100g PÓ 100ml
    Butírico 4:0 0,02 0,004
    Capróico 6:0 0,13 0,028
    Caprílico 8:0 6,76 1,453
    Cáprico 10:0 4,76 1,023
    Láurico 12:0 0,25 0,054
    Mirístico 14:0 0,09 0,019
    Palmítico 18:0 0,61 0,131
    Esteárico 18:0 0,31 0,067
    Palmitoléico 16:1 0,05 0,011
    Oléico 18:1 1,30 0,280
    Linoléico 18:2 2,19 0,471
    Alfa-Linolênico 18:3 0,30 0,065


    		 
       



    Vitaminas e Minerais  
     
    As vitaminas, minerais e microelementos são essenciais para a manutenção do metabolismo normal, desempenhando funções fisiológicas específicas. PEPTAMEN atende às recomendações para vitaminas e minerais em 1500ml de dieta(1).

    Teor de vitaminas e minerais de PEPTAMEN PÓ

    VITAMINAS E MINERAIS 100g 1000ml % adequação
    do RDI*
    Vitamina A UI 1900 4000 80
    Vitamina D UI 130 280 70
    Vitamina E UI 13 28 93
    Vitamina K mcg 23 50 63
    Vitamina C mg 65 140 233
    Tiamina B1 mg 0,93 2 133
    Riboflavina B2 mg 1,1 2,4 141
    Niacina PP mg 13 28 140
    Vitamina B6 mg 1,9 4 200
    Ácido Fólico mcg 250 540 135
    Ácido Pantotênico mg 6,5 14 140
    Vitamina B12 mcg 3,7 8 133
    Biotina mcg 190 400 133
    Colina mg 210 450 **
    Taurina mg 37 80 **
    L-Carnitina mg 37 80 **
    Sódio mg 365 780 **
    Potássio mg 580 1250 **
    Cloreto mg 467 1000 29
    Cálcio mg 370 800 80
    Fósforo mg 325 700 70
    Magnésio mg 186 400 100
    Ferro mg 5,6 12 67
    Iodo mcg 46 100 67
    Cobre mg 0,65 1,4 70
    Zinco mg 6,5 14 93
    Manganês mg 1,23 2,7 135
    Selênio mcg 19 40 57
    Molibdênio mcg 56 120 160
    Cromo mcg 19 40 33

    (1) em vitamina K (95 %); Cl (44 %); Se (86 %), Cr (50 %).
    * Reference Daily Intake para adultos e crianças acima de 4 anos.
    ** Não estabelecido.

    		  
       



    Características Físicas  
     
    Osmolaridade / Osmolalidade

    Ambas são medidas de pressão osmótica exercida pela solução, ou seja, medem a concentração das partículas osmoticamente ativas nessa solução. A osmolaridade das dietas líquidas é muito importante. As dietas hipertônicas podem causar diarréia e desconforto em pacientes que estão sob dieta enteral. As fórmulas hiperosmolares, inicialmente devem ser administradas de forma gradual. Assim sendo, o paciente pode estar recebendo nutrientes em teor inferior ao necessário, durante o estágio crítico da terapia nutricional.
    As dietas PEPTAMEN têm uma faixa de osmolalidade baixa a fim de minimizar o risco de diarréia osmótica, proporcionando maior segurança na administração.

    APRESENTAÇÃO OSMOLARIDADE
    mOsm/lm    		 OSMOLALIDADE
    Osm/kgH2O
    *PÓ 320 375


    Carga de soluto renal

    Os solutos que devem ser excretados na urina são denominados carga de soluto renal. A carga de soluto renal determina o volume de água requerido para formar urina. As substâncias que mais contribuem para a carga de soluto renal são sódio, potássio, cloreto e uréia.

    As cargas de soluto renal de PEPTAMEN foram calculadas de acordo com o método proposto por Ziegler e Fomon.

    242 mOsm/l ( PEPTAMEN PÓ*).


    Teor de Água

    85% (PEPTAMEN PÓ*).
    *Na reconstituição padrão.

      PÓ 400g
    Sabor Baunilha
    Validade 18 meses
    Validade após aberto 30 dias



    		 
       



    Reconstituição do pó  
     
    1.0cal/ml

    Volume Total Número de medidas PEPTAMEN pó/total em gramas Volume de água
    250ml 56g ou 6 medidas 210 ml
    500ml 107g ou 13 medidas 425 ml
    1.0 litro 215g ou 26 medidas 850 ml


    Rendimento da lata 430g: 2000ml.

    		  
       



    Referências bibliográficas  
     
    1) Mac Burney MM, Russel C, Young LS. Formulas. In Rombeau JL,Caldwel MD(eds). Enteral and Tube Feeding. Philadelphia, PA:WB Saunders Co.,1990.

    2) Zaloga GP, Studies comparing intact protein, peptide and amino acid formulas. In Bounsous G (ed) Elemental Diet in Clinical Situations. Boca Raton, FL: CRC Press; 1993.

    3) Silberman H. Enteral Nutrition. Parenteral and Enteral Nutrition. Norwalk, CT:Appleton and Lange; 1989.

    4) Mac Burney MM, Russel C, Young LS. Formulas. In Rombeau JL, Caldwell MD (eds). Enteral and Tube Feeding. Philadelphia, PA:WB Saunders Co., 1990.

    5) Curtis KJ, Gains HD, Kim YS. Protein digestion and absorption in rats with pancreatic duct occlusion. Gastroenterology. 1979; 74:1271-1276.

    6) Gardner ML, Lindblad BS, Burston D, Matthews DM, Trans-mucosal passage of intact peptides in the guinea-pig small intestine in vivo: a re-appraisal. Clin Sci. 1983; 64:433-439.

    7) Webb KE.Amino acid and peptide absortion from the gastrointestinal tract.Fed Proc 1986;45:2268-2271.

    8) Matthew DM.Intestinal absortion of peptides. Physiol Ver. 1975; 55:537-608.

    9) Rerat A, Nunes CS, Mendy R, Roger L.Amino acid absorption and production of pancreatic hormones in non-anaesthetised pigs after duodenal infusions of milk enzymatic hydrolysate or of free amino acids. Br J Nutr. 1988; 60:121-136.

    10) Lis MT, Matthews DM, Crampton RF. Effects of dietary restriction and protein deprivation on intestinal absortion of protein digestion products in the rat. Br. J Nutr. 1972; 28:443-446.

    11) Crampton RF, Gangolli SD, Simson P, Matthews DM. Rates of absortion by rat intestine of pancreatic hydrolisates of proteins and their corresponding amino acids mixtures. Clin Sci. 1971; 42:409-417.

    12) Craft IL, Geddes D, Hyde CW, Wise IJ, Matthews DM. Absortion and malabsortion of glycine and glycine peptides in man. Gut. 1968; 9:425-437.

    13) Nixon SE, Mawer GE. The digestion and absortion of proteins in man. The form in which protein is absorbed. Br. J Nutr. 1970; 24:241-258.

    14) Adibi S A. Amino acid and peptide absorption in human intestine: implications for enteral nutrition. In: Blackburn GL, Grant JP, Young VR, eds. Amino acids: metabolism and medical aplications. Boston: Jonh Wright. PSG Inc., 1983: 255-63.

    15) Silk DBA, Grimble GK, Rees RG.Protein digestion and amino acid and peptide absorption. Proc Nutr Soc 1985; 44:63-72.

    16) Adibi S A, Fogel MR, Agrawal RM. Comparision of free amino acid and dipeptide absorption by the jejunun of sprue patients.Gastoenterology 1974; 67:1586-1591.

    17) Fogel MR, Ravitch MM, Adibi S A. Absortive and digestive function of the jejunun after jejunoileal bypass for treatment of human obesity. Gastroenterology 1976; 71:729-723.

    18) Adibi S A . Kim YS. Peptide absorption and hydrolysis. In Johnsonl (ed). Physiology of the Gastrointestinal Tract. New York, NY: Raven Press; 1981.

    19) Matthews DM, Adibi S A . Peptide absorption. Gastroenterology. 1976; 71:151-161.

    20) Warshaw AL, Walker WA, Isselbacher J, et al. Protein uptake by the intestine: evidence for absorption of intact macromolecules. Gastroenterology. 1974; 66:987-992.

    21) Danforth E, Moore RO. Intestinal absorption of insulin in the rat. Endocrinology. 1959; 65:118-123.

    22) Amoss M,Rivier J, Guillemin R. Release of gonadotrophins by oral administration of synthetic LRF or a tripeptide fragment of LRF.J Clin Endocrinal Metab. 1972; 35:175-177.

    23) Brinson RR, Pitts WM, Benoit Jeffect of b-casomorphin, a casein hydrolisate derivative, on intestinal permeability in volume expanded hypoproteinemic rats. J. Parenter Enteral Nutr.

    24) Adibi S A . Allen ER. Impaired jejunal absorption rates of essential amino acids induced by either dietary caloric or protein deprivation in man. Gastroenteology. 1970; 59:404-413.

    25) Gardner ML. Intestinal assimilation of intact peptides and proteins from the diet-a neglected field? Biol Ver. 1984; 59: 289-331.

    26) Shou JS, Lieberman MD, Hofman K, et al. Dietary manipulation of methotrexate-induced enterocolitis.J Parenteral Enteral Nutr.1991; 15:307-312.

    27) Zaloga GP,Ward KA,Prielipp RC.Effects of enteral diets on whole body and gut growth in unstressed rats.J Parenter Enteral Nutr.1991; 15:42-47.

    28) Zaloga GP Bedside method for placing small bowell feeding tubes in critically ill patients. Chest 1991; 100:1643-1646.

    29) Shou J, Ruelaz EA, Redmond HP, et al. Dietary protein prevents bacterial translocation from the gut. J Parenteral Enteral Nutr. 1991; 15(suppl):29. Abstract.

    30) Janne P, Carpentier Y, Willems G. Colonic mucosal atrophy induced by a liquid elemental diet in rats. Dig Dis Sci. 1977; 22:808-812.

    31) Morin CL, Ling V, Bourassa D.Small intestinal and colonic changes induced by a chemically-defined diet. Dig Dis Sci. 1980; 25:123-128.

    32) Birke H, Thoiacus-Ussing O, Hessov I. Trophic effect of dietary peptides on mucosa in the rat bowel. J Parenter Enteral Nutr. 1990; 14(suppl): 2. Abstract.

    33) Shou J, Minnard E, Motyka L, Daly JM.Interleukin-4 reduces chemically-defined diet (CDD) induced bacterial translocation im mice. J Parenter Enteral Nutr. 1992; 16(suppl):24.Abstract.

    34) Bounous G, Sutherland NG, McArdle AH, Gurd FN. The prophylactic use of an "elemental" diet in experimental hemorrhagic and intestinal shock and in intestinal ischemia. Ann Surg.1967; 166:312-343.

    35) Anderson WMcD, Brinson RR, Conrad AS, Robinson RH, Intestinal protein loss during enteral alimentation in critically ill patients. J Parenter Enteral Nutr.1990; 14 (suppl): 24. Abstract.

    36) Heird WC. Essentially of cyst(e)ine for neonates: Clinical and biochemical effects of parenteral cysteine supplementation. In:Kinney JM, Borum PR,eds. Perspectives in Clinical Practice.Baltimore:Urban &Schwarzenberg; 1989; 275-282.

    37) Malmezat T, Breuillé D, Pouyet C, Patureau Mirand P, Obled C. Metabolism of cysteine is modified during the acute phase of sepsis in rats. J of Nutrition 1998; 128:97-105.

    38) White AC, Thannickal VJ,Fanburg BL. Glutathione deficiency in human disease. J Nutr Biochem 1994; 5:218-226.

    39) Bray TM, Taylor CG. Tissue glutathione, nutrition, and oxidative stress. Can J Physiol Phar 1993; 71:746-751.

    40) Bounous G, Batist G, Gold P. Whey proteins in cancer prevention. Cancer Letters 1991; 57:91-94.

    41) Bonous G, Batsit G, Gold P. Immunoenhancing prperty of dietary whey protein in mice: roll of glutathione. Clin & Investigative Med 1989; 12:154-161.

    42) Meister A. Glutathione, ascorbate, and cellular protection. Cancer Res 1994; 54:1969S-1975S.

    43) Rowe B, Kudsk K, Borum P, Madsen D. Effects of whey and casein based diets on glutathione and cysteine metabolism in ICU patients. J Am Coll Nutr 1994; 124:323-330.

    44) Agricultural Research Service. Composition of Foods. Agriculture Handbook No. 8-1. Washington DC: United States Department of Agriculture; 1976.

    45) Vasquez JÁ, Morse EL, Adibi S A . Effect of starvation on amino acid peptide transport and hydrolysis in humans. Am J Physiol. 1985; 249: G563-G566.

    46) Fogel MR, Ravitch MM, Adibi S A. Absortive and digestive function of the jejunun after jejunoileal bypass for treatment of human obesity. Gastroenterology 1976; 71:729-733.

    47) McArdle AH, Echave W, Brown RA, et al. Effect of elemental diet on pancreatic secretion. Am J Surg. 1974; 128:690-692.

    48) Cassim MM, Allardyce DB. Pancreatic secretion in response to jejunal feeding of elemental diet. Ann Surg. 1973; 180:228-692.

    49) Ertan A, Brooks FP, Ostrow JD, et al. Effect of jejunal amino acid perfusion and exogenous cholecystokinin on the exocrine pancreatic and biliary secretions in man. Gastroenterology. 1971; 61:686-692.

    50) Howard L, Michalek AV, Alger S A . Enteral nutrition and gastrointestinal, pancreatic, and liver disease. In Rombeau JL, Caldwell MD(eds). Enteral and Tube Feeding. Philadelphia, PA:WB Saunders Co.: 1990.

    51) Milla PJ, Kilby A, Rassam UB, Ersser R, Harries JT. Small intestinal absorption of amino acids and a dipeptide in pancreatic insufficiency. Gut 1983; 24:818-824.

    52) Smith JL, Artega C, Heymsfield SB. Incresed ureagenenesis and impaired nitrogen use during infusion of a synthetic amino acid formula. N Engl J Med 1982; 306:1013-1018.

    53) Vanderhoff JÁ. Evalution of a fat containing elemental diet for treatment of short bowel syndrome in children. JPEN 1988 12 (suppl) 215.

    54) Van Way CW. Nutritional support in the injured patients. Surg clin North Am. 1991; 71:537-548.

    55) Mc Clave S A , Greene LM, et al. Comparision of the safety of early enteral vs parenteral nutrition im mild acute pancreatitis. JPEN 1997; 21:14-20.

    56) Lohnes H. Use of Peptamen formula in the treatment of pediatric Crohn’s Disease. Study on file with Clintec Nutrition Co.1991.

    57) Brinson RR, Pitts VL, Taylor AE. Intestinal absorption of peptide enteral formulas in hypoproteinemic (volume expanded) rats: a paired analysis. Crit Care Med. 1989; 647-660.

    58) Borlase BD, Bell SJ, Lewis EJ et al. Tolerance to enteral tube feeding diets in hypoalbuminaemic critically ill geriatric patients. Surg Gynecol Obstet 1992; 174:181-188.

    59) Trocki O, Mochizuki H, Dominioni L, Alexander J W. Intact protein versus free amino acids in the nutritional support of the thermally injured animals. J Parenter Enteral Nutr. 1986; 10:139-145.

    60) Plumb J A, Gardner ML. Can elemental diets reduces the intestinal toxicity of 5FU. JPEN 1983; 7:351-357.

    61) Boza JJ Martinez-Augustin O, Baro L, Suarez MD,Gil A. Protein versus enzymatic protein hydrolysates. Nitrogen utilization in starved rats Br J Nutr 1995;73:65-71.

    62) Mahan LK, Escott-Stump S. Krause’s Food Nutrition & Diet Theraphy. 9th. Edition. Philadelphia.WB Saunders,1996.

    63) Flourié B. Desjeux Jehan-Francois Quantité de lactose tolérable dans un mélange pour nutrition entérale. Nutr Clin Méabol 1997; 11:103-110.

    64) A.S.P.E.N. Rationale for Adult Nutrition Support Guidelines. Nutr Clin Prac Vol 17 (4) S:1993, p.21AS.

    65) Poullain MG, Cezard JP, Roger L, Mendy . Effects of proteins, their oligopeptide hydrolysates and free amino acid mixtures on growth and nitrogen retention in fed and starved rats. J Parenter Enteral Nutr 1989; 13:382-386.

    66) Boza JJ Jimenez J, Baro L, Martinez O, Suarez MD,Gil A.Effect of native and hydrolizate whey protein on intestinal repair of severe starved rats at weaning. J Pediatr Gastroenterol Nutr 1996; 22:186-193.

    67) Billeaud C.,Guillet J.,Sandler, B.Gastric emptying in infants with or without gastrooesophageal reflux according to the type of milk. Euro. J. Clinical Nutr. 1990;44:577-583.

    68) Fried MD, Khoshoo V, Secker DJ, Gilday DL, Ash JM, Pencharz PB. Decrease in gastric emptying time and episodes and episodes of regurgitation in children with spastic quadriplegia fed a whey-based formula. Pediatrics 1992; 120:569-572.

    69) Brinson RR. The effect of peptide-based diets on the intestinal microcirculation in a rat model. Nutr Clin Prac. 1990; 5:238-240.

    70) Brinson RR, Hanmanthu SK, Pitts WM.A reppraisal of the peptide based enteral formulas:clinical applications. Nutr Clin Prac. 1989; 4:211-217.

    71) Graf LJ, Beal J, Steele S. Management of chronic weight loss with na elemental enteral formula. AIDS Patient Care. 1992:50-51.

    72) Granger DN, Brinson RR. Intestinal absorption of elemental and standard enteral formulas in hypoproteinemic(volume expanded) rats. J Parenter Enteral Nutr. 1988; 12:278281.

    73) Ziegler F, Olivier JM,Cynobar L,et al.Efficacy of enteral nitrogen support in surgical patients:small peptides vs.non-degraded proteins. Gut. 1990; 31:1277-1283.

    74) Polk DB, Hattner JT, Kerner JÁ. Improved growth and disease activity after intermittent administration of a defined formula diet in children with Crohn’s Disease. JPEN 1992; 16499-704.

    75) McClave S A , Lowen CC, Snider HL.Immunonutrition and enteral hyperalimentation of critically ill patients. Dig Dis Sci. 1992;37:1153-1161.

    76) Zaloga GP, Knowles R, Black K et al. Total parenteral nutrition increases mortality after hemorrhage. Crit Care Med 1991; 19:54-59.

    77) Brinson RR, Curtis WD, Singh M. Diarrhea associated with sever hypoalbuminemia: a comparision of peptides based chemically defined and standard enteral alimentation. Crit Care Med. 1988; 16:130-136.

    78) Brinson RR, Curtis WD, Singh M. Diarrhea in the intensive care unit: the role of hypoalbuminemia and the response to a chemically defined diet. (case reports and a review of the literature). J Am Coll Nutr.1987; 6:517-523.

    79) Meredith JW, Ditesheim JÁ, Zaloga GP. Visceral protein levels in trauma patients are greater with peptide diet than intact protein diet. J Trauma. 1990;30; 825-829.

    80) Bounous G, Le Bel E, Shuster J, Gold P, Tahan, WT, Bastin E. Dietary protection during radiation theraphy. Strahlentherapie.1975; 149:47 6-483.

    81) BrownVS, Buchman RB, Karran SJ. Clinical observations on the effects of elemental diet supplementation duing irradiation. Clin Radiol 1980; 31:19.

    82) Beer WH, Fan A, Halsted CH. Clinical and nutritional implications of radiation enteritis.Am J Clin Nutr 1985; 41:85-91.

    83) Stanford JR, King D, Carey L, Anderson G. The adverse effects of elemental diets on tolerance for 5-FU toxicity in the rat. J Surg Oncol.1977; 9:493-501.

    84) McAnena OJ, Harvey LP,Bonau RA, Daly JM. Alteration of methotrexate toxicity in rats by manipulation of:dietary components. Gastroenterology 1987; 92:354-360.

    85) Bounous G, Gentile JM,Hugon J.Elemental diet in the management of the intestinal lesion produced by fluouroacil in man. Can J Surg. 1971; 14:312-324.

    86) Gottschlich MM.Selection of optimal lipid sources in enteral and parenteral nutrition. Nutr Clin Pract 1992; 7:152-156.

    87) Unsatured Fatty Acids Nutrition and Physiological Significance. The British Nutrition Foundation, Chapman & Hall, London, 1992.

    88) Department of Health ; Dietary Reference Values: A guide. HMSO, London, 1991.

    89) Recommended Dietary Allowances 10th edition. National Academy Press. Washington DC,1989.

    90) Yates AA, Schlicker AS, Suitor CW. Dietary Reference Intakes: The new basis for recommendations for calcium and related nutrients, B vitamins, and choline. J. Am Diet. A. 1998; 98:699-706.

    91) Donald P, Miller E, Schirmer B. Repletion of nutritional parameters in surgical patients receiving peptide versus amino acid elemental feedings. Nutrition Research. 1994; 14:3-12.

    92) Ziegler F, Nitenberg G, Coundray-Lucas C, et al. Pharma cokenetic assessment of an oligopeptide based enteral formula in abdominal surgery patients. Am J Clin Nutr. 1998; 67:124-128.

    93) Rodriguez DJ, Clevenger FW. Successful enteral refeeding after massive small bowel resection. Western J Med. 1993; 159-194.

    94) Hasse JM, Blue LS, Liepa GU, et al. Early enteral nutrition support in patients undergoing liver transplantation. J Parenter Enteral Nutr. 1995; 19:437-443.

    95) Royall D, Jeejeebhoy KN, Baker JP, Allard JP, Habal FM, Cunnaine SC, Greenberg GR. Comparision of amino acid v peptide based enteral diets in active Crohn’s disease: clinical and nutritional outcome. Gut 1994; 35:783-787.

    96) Salomon SB, Jung J, Voss T, et al. An elemental diet containing medium chain triglycerides and enzymatically hydrolyzed protein can improve gastrointestinal tolerance in people infected with HIV.J Am Diet A 1998; 98:460-462.

    97) Voss T, et al. VII International Conference on AIDS< 1993.

    98) Champe PC, Harvey RA. Lippincott’s Illustrated Reviews, Biochemistry 2nd ed. Philadelphia. JB Lippincott, 1994.

    99) Shaw JHF, Wildbore M,Wolfe RR. Whole body protein kinetics in severely septicpatients. Ann Surg 1987; 205:288-94.

    100) Cerra F, Hirsch J, Mullen K, Blackburn G, Lutker W. The effect of stress level, amino acid formula, and nitrogen dose on nitrogen retention in traumatic and septic stress. Ann Surg 1987; 205:282-7.

    101) Donald P, Miller E, Schirmer B. Repletion of nutritional parameters in surgical patients receiving peptide versus amino acid elemental feeding. Nutrition Research. 1994; 14:3-12.

    102) McClave S A . Greene LM, Snider HL, et al. Comparision of the safety of early enteral vs. Parenteral nutrition in mild acute pancreatitis. J Parenter Enteral Nutr. 1997; 21:14-20.

    103) Hasse JM, Blue LS, Liepa GU, et al. Comparision of the safety of early enteral nutrition support in patients undergoing liver transplantation.J Parenter Enteral Nutr.1995;19:437-443.

    104) Royal D, Jeejeebhoy KN, Baker JP, Habal FM, Cunnaine SC, Greenberg GR. Comparision of amino acid v peptide based enteral diets in active Crohn’s disease: clinical and nutritional outcome. Gut 1994; 35:783-787.

    105) Matthews DM. Intestinal absorption of peptides. Physiol Ver. 1975; 55:537-608.

    106) Adibi SA. Morse EL. The number of glycine residues wich limits intact absortion of glycine oligopeptides in human jejunun. J Clin Invest. 1977; 60:1008-1016.

    107) Hautefeuille J, et al. In vitro effects of B-casomorphins on ion transport in rabbit ileum. Am J Physiol. 1986; 250:G92-G97.

    108) Alverdy JC, Aoys E,Moss GS. Total parenteral nutrition promotes bacterial translocation from the gut. Surgery. 1988; 104:185-190.

    109) Bounous G, Le Bel E, Shuster J, Gold P, Tahan, WT, Bastin E. Dietary protection during radiation theraphy. Strahlentherapie.1975; 149:476-483.

    110) Brown MS, Buchman RB, Karran SJ. Clinical observations on the effects of elemental diets supplementation during irradiation. Clin Radiol. 1980; 31:19-20.

    111) Anderson W, Brinson RR, Conrad S A , Robinson RH. Intestinal protein loss during eknteral alimentation in critically ill patients. J Parenteral Nutr. 1990: 14 (suppl):24. Abstract.

    112) Romito RA. Early administration of enteral nutrients in critically ill patients. AACN Clinical Issues 1995; 6:242-256.

    113) Zaloga GP, Meredith JW, Roberts P, et al. Improved hepatic protein responses with hydrolyzed protein versus intact protein diets after trauma. Crit Care Med. 1992; 20 (suppl):94.Abstract.

    114) Tucker HN, Miguel SG. Cost containment through nutrition intervention. Nutrition Reviews 1996; 54:111-121.

    115) Steinhardt HJ, Wolf A, Jakober B, et al. Nitrogen absorption in pancreatectomized patients: protein versus protein hydrolysed as substrate. J Lab Clin Med. 1989; 113:162-167.

    116) Cosnes J, Evard D, Beaugerie L, Gendre JP, Le Quintrec L. Improvement in protein absortion with a small peptide based diet in patient with high out put jejunostomy.Nutrition. 1992; 8:406-411.

    117) Riecht G, Petrisch W, Eherer A, Smolie KH, Kahn JM, Kres GJ. Jejunal protein absorption of whey protein and its hydrolisate. J Parenter Enteral Nutrition. 1992; 16 (suppl): 25. Abstract.

    118) Bounous G. Elemental diets in the prophylaxis and therapy for intestinal lesion update. Surgery. 1989; 571-575.

    119) Beitler JK, Mahler PA, Yamanaka WK, Guy DG, Hutchinson ML. The effect of the hydroliytic state of dietary protein on post irradiation morbidity na mucosal cell regeneration. Int J Radiat Oncol Biol Phys. 1987; 13:385-391.

    120) Pageau R, Lllier F, Bounous G. System protection against radiation. Effect of elemental diet on hematopoietic and immunologic systems in the rat. Radiat Res. 1975; 62:357.

    121) Food and Drug Administration, 21 Code of Federal Regulations; 4-1-96 Edition, 101.9.

    122) Sitren HS, Jonhs LG, Solomon BS, et al. Modulation of methotrexate (MTX) toxicity by protein source in solid diets and in enteral formulas. J Parenter Enteral Nutr. 1993; 17 (suppl): 32.Abstract.

    		  
       






         
    Consumidores
    Profissionais
    Empresas


    Seu Site na Internet